En los aspectos
del comportamiento de prepóstura se observó que las tomas de la muestra N°1
tuvieron una duración en promedio de 3,5 días con un rango entre 2-12 días, la
muestra N°2 presento una media de 3,6 días con un rango de 1-12 días y la
muestra N°3 duro 3,9 días en promedio con un rango de 2-6 días. La temperatura media promedio mayor fue de
31°C y la menor de 22,5°c. Con una humedad del 88% en las muestras. Estos
resultados se comparan a continuación con los obtenidos en otros países con
condiciones climáticas diferentes.
En Italia,
Canestrini 1887 (Acari: Ixodidae)[1], expresa que este periodo
varía entre 3-8 días. En argentina, (Núñez et al., 1987)[2], sobre un total de 6000 observaciones,
obtuvo para el verano de 2 a 6 días, con una moda de 3 y una media de 3,4 días.
Esta fase, en
condiciones favorables de humedad (80%) y temperatura (28-30°C) dura de 2 a 4
días; no obstante, durante los meses de clima frío puede durar hasta 97 días
(Rosario-Cruz et al., 2007)[3].
Nuestras
observaciones para este período sugieren que la temperatura es el factor
ambiental que más influencia su duración. De la Vega, citado por Nari (1992),
confirma esta suposición, llegando a afirmar que el incremento de temperatura
reduce linealmente el tiempo de prepóstura hasta un máximo de 32º C, a Partir
del cual el efecto es inverso. Tales temperaturas no fueron predominantes en
nuestro estudio.
En el Período de ovoposición se observó que la muestra N°1 tuvo una media
de 12,8 con un rango de 9-16 días, en la muestra N°2 se presentó una media de
12,7dias con rango de 7-18 días y la muestra N°3 una media de 12,4 días con un
rango de 10-15 días. En otras experiencias realizadas se obtuvo; en Italia, Canestrini 1887
(Acari: Ixodidae), menciona que el tiempo puede ser de 14-34dias. En argentina,
Ivancovich (1975)[4]
observó 9 y 10 días en periodo seco (verano), respectivamente, y 27 en periodo húmedo (invierno).
Las cifras
obtenidas en el presente estudio no difieren mucho de las obtenidas en los
países mencionados. Teniendo en cuenta que las bajas temperaturas suspenderían
el desove, reduciendo la producción ovígera y el período en sí, mientras que
las altas temperaturas estimularían su incremento. Al respecto, De la Vega,
citado por Nari (1992)[5], ha encontrado que el
desove puede completarse entre 5 y 17 días en condiciones favorables de
temperatura (21 a 36º C), con una eficiencia de postura.
El período de
incubación observado para este estudio fue en la muestra N°1 de 25,1 días con
un rango de 14-31 días, en la muestra N°2 de 27,1 días con un rango de
18-34dias y en la muestra N°3 de 13 días con un rango de 9-19 días con una
temperatura media promedio de 22,1°C la mínima - 30,4°C la máxima y una humedad
del 92,4%. En otras prácticas fue más
largo este período según Canestrini 1887 (Acari: Ixodidae), esta etapa varía entre
30-70dias. Este valor, no es cercano a ninguno de los resultados obtenidos en
el presente estudio. Por el contrario un Período similar ha sido notificado por
Hooker et al. (Citado por Núñez, 1987): 24 días en laboratorio y de 27 a
34 días al medio ambiente. En condiciones de laboratorio y a 26º C y 80% de
humedad relativa (HR). Otro que dista mucho de ser similar a lo encontrado en
el presente estudio es la Investigación en Australia (CSIRO, 1955) se encontró
que este período varió entre 28 y 112 días. (Núñez, 1982[6]; Castellanos, 1998)[7]. Afirman que Esta fase que
inicia con la ovoposición y finaliza con la eclosión larvaria, los factores
ambientales como temperatura y humedad puede influir directamente sobre la
evolución del embrión,
las condiciones ideales parecen ser temperaturas medias
entre 25 y 32ºC con lluvias copiosas, y pastos vigorosos, las cuales pueden
acortar el período de incubación hasta menos de 21 días..
El periodo de eclosión
larvaria observado en la muestra N°1 presento una media de 11,1dias con un
rango de 5-17dias, la muestra N°2 tuvo una media 6,8 días en un rango de 1-14
días y la muestra N°3 con una media de 12,6 con un rango de 5-16dias. En
comparación con el tiempo establecido por Canestrini 1887 (Acari: Ixodidae) que
tiene una duración de 1-3 días, los resultados obtenidos en nuestra
investigación es desmesurado.
El ciclo biológico de
la garrapata Rhipicephalus microplus está dividido en dos fases: de vida libre y
de vida parasitaria (Solís, 1993)[8].
En el periodo final de la fase libre la sobrevivencia Larval en la
muestra N°1 tuvo un rango de 9,5 – 28,5 días con una media de 20,1, la muestra N°2 un rango de
5,5 – 17 días con una media de 13,3 días y la muestra N°3 con un rango de 16-
25,5 días con una media de 17,8 días. Manejando una temperatura promedio mínima
de 22,2°C y máxima de 30,2°C con una humedad relativa del 88%. Se observaron diferencias importantes ya que
la supervivencia larval de nuestro estudio no coincide con ningún dato proporcionado
por los investigadores en seguida mencionados. Los períodos de supervivencia
larval en otras experiencias varían según las condiciones del estudio. En
Argentina, Núñez et al. (1987) observaron una supervivencia de hasta 204
días en condiciones de laboratorio (20 a 22º C, 80% HR, y bajo sombra). Según
los autores, este período tan prolongado fue resultado de condiciones
ambientales favorables. Lombardero (citado por Helman, 1983) afirma que la vida
libre de las larvas sin alimentarse puede ser de hasta 180 días, reduciéndose
en épocas de altas temperaturas y sequías persistentes. Canestrini 1887 (Acari:
Ixodidae) contempla que pueden sobrevivir en inanición hasta 240dias.
El amplio rango de la fase de vida libre se debe a la
influencia de los factores ambientales, sobre todo temperatura y humedad, así,
el ciclo puede acortarse a 20 días en condiciones muy favorables o prolongarse
hasta 299 días en condiciones de frío extremo. Se ha informado de larvas que
sobreviven hasta 286 días como larvas de vida libre sin alimentarse
(Rosario-Cruz et al., 2007).
Uno de los
fenómenos que tiene una particular significancia en los estudios de la fase no
parásita de garrapatas es la sobrevivencia larval, ya que contribuye a la
determinación del encuentro de hospederos y su conocimiento es importante para
el desarrollo de programas de control basados en la rotación de pastos.
En estudios
realizados sobre el tema se ha observado que en los meses húmedos se presenta
una longevidad más prolongada que en los meses secos, factores climáticos, a
este respecto, investigadores australianos, observaron una media de
sobrevivencia larval de sólo una semana
El proceso que
completa el ciclo de desarrollo de la garrapata lo constituye la fase parásita,
que corresponde a una serie de eventos que se realizan en el hospedero y como
su nombre lo indica, es la más importante ya que en esta se lleva a cabo el
conjunto de procesos patológicos que dan como consecuencia las pérdidas en
producción del ganado. En las especies de un solo hospedero como es el caso de Boophilus
microplus las larvas dan inicio a esta fase, la cual tienen una duración de
21 días en promedio; durante este tiempo las garrapatas se alimentan de la
sangre del hospedero, realizándose también los procesos de muda o cambio de
estadio, sobre este fenómeno canestrini 1887 (Acari: Ixodidae) mencionan que la aparición de ninfas se da durante 5 – 14 días y las adultos
(teleoginas) se presenta durante 4-30 días. La fase parásita concluye con el
desprendimiento de las garrapatas hembras ya alimentadas que caen al suelo para
ovopositar.
Los resultados obtenidos de la investigación en la fase no
parasitaria contempla que la muestra N°1 presento una media de 72,6dias, la
muestra N°2 una media de 63,5dias y la muestra N°3 una media de 59,7dias. Con
una temperatura promedio mínima de 22°C – máxima 30,4°C y una humedad relativa
del 90%.
El análisis estadístico descriptivo y la comparación de
medias de las muestras tomadas nos permite inferir que se pueden presentar en
el año en la muestra N°1. (5) ciclos anuales y en las muestras N°2 y 3 (6)
ciclos anuales. Canestrini 1887 (Acari: Ixodidae) expresa que se pueden dar 5 ciclos anuales.
En zonas tropicales, la garrapata común del bovino puede desarrollar hasta 5
ciclos anuales, pero en áreas más meridionales, como el norte de Santa Fe, sólo
tiene capacidad para completar entre 2 y 3 ciclos anuales[9].
Evidenciando que el comportamiento fisiológico presento un
leve incremento en los periodos del ciclo no parasítico, teniendo en cuenta los
aspectos geográficos y atmosféricos; en el departamento del meta (Colombia)
donde se realizó el estudio se presenta un clima cálido Debido a su cercanía a la línea del ecuador, con
temperaturas mínimas de 18°C - máxima
38°C, anuales promedio. La temperatura guarda
cierta relación con la precipitación,
de manera que los meses más lluviosos (invierno) son de abril-agosto, el tiempo
seco (verano) es de septiembre-marzo y se maneja un tiempo transitorio de
diciembre- marzo[10].
Las muestras estudiadas se realizaron en tiempos diferentes; la muestra N°1 se
tomó en tiempo de lluvia (mayo-julio), la muestra N°2 a finales de la época de
lluvia extendiéndose hasta la época seca (julio-septiembre) y la muestra N°3 se
analizó en tiempo seco (septiembre-noviembre). En comparación con las
temperaturas de los países que se realizó el análisis comparativo los cuales
manejan periodos estacionales más largos (verano, invierno, otoño y primavera)
con temperaturas más altas y bajas que
descienden a bajo cero. Ya cabe resaltar que no obstante a ello la
disparidad de tiempo no fue desproporcional a lo establecido en los estudios ya
realizados.
[1] Canestrini, 1887. (Acari: Ixodidae) in cattle in Minas Gerais State,
Brazil. Trop Anim Health Prod 32, 375-380.
[2] Nuñez, JL; Muñoz, ME; Moltedo, HL. 1987. Boophilus microplu s. La Garrapata Común del Ganado Vacuno. Edit. Hemisferio
Sur. Buenos Aires. Argentina. 184 pSur. Editor, Buenos Aires,Argentina. Pp.
53-70.
[3] Rosario-Cruz,
R., Domínguez-García D.I., Hernández-Ortiz R., Rojas-Ramirez E. 2007.
Estrategias para el control integral de la garrapata Boophilus microplus y la
mitigación de la resistencia. CENID-PAVET INIFAP, Jiutepec. Morelos, México.
12.
[4]Ivancovich,
CM.1975. Boophilus microplus. La garrapata común del ganado vacuno. Ed.
HemisferioSur. Argentina.
[5] Nari, A. 1992. Resistance to
ecto and endoparasites. A challenge for the XX1 Century. Seminario Internacional de Parasitología
Animal. Mérida, Yucatán. México.
[6] Nuñez, J.L. Cobeñas, M.M.E., Moltedo, H.L. 1982. Boophilus microplus,
lagarrapata común del ganado vacuno. Hemisferio Sur.
Editor, Buenos Aires,Argentina. Pp. 53-70.
[7] Castellanos, JL. 1998. Seguimiento a
predios con garrapata resistente hacia los ixodicidas y alternativas para su
control. Curso de diagnóstico y control de la principales enfermedades
parasitarias. Facultad de Medicina Veterinaria de la Universidad Autónoma de
Tamaulipas. Ciudad Victoria, Tamps. México.
[8] Solís, S.S. 1991.
Ecología de las garrapatas Boophilus: Perspectivas de un panorama. Memorias del
II Seminario Internacional de Parasitología Animal. Garrapatas y enfermedades
que transmiten. Octubre 9-11. Morelos, México. SARH-UNAM-UAEM-IICA-INIFAP. Pp.
19-30.
[9] Centros de
investigación de referencia para el diagnóstico de garrapatas: -Laboratorio de
Parasitología e Inmunología, INTA Rafaela, Ruta 34 Km 227, CP2300, Rafaela,
Santa Fe; - Cátedra de Parasitología, Facultad de Ciencias Veterinarias, UNL,
Luis Kreder 2805, S3080HOF, Esperanza, Santa Fe; - Grupo Producción Animal,
INTA Salta, Ruta 68 Km 172, CP4403,Cerrillos, Salta. -SENASA, Centro Regional
Santa Fe, Oficina Santa Fe, Puerto, Dique 1, CP 3000, Santa Fe, Santa Fe.
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